FL6000Pengukur fluoresensi klorofil modulasi ganda

FL6000Fluorescent klorofil dual modulasi adalah versi terkini yang ditingkatkan daripada Fluorescent klorofil dual modulasi FL3500 yang khusus untuk alat penyelidikan saintifik yang kuat untuk penyelidikan mendalam mekanisme fotosintesis terhadap suspensi mikroalga, klorofil atau kista seperti alga biru-hijau atau alga hijau. Instrumen ini mempunyai kawalan pengukuran dua saluran, yang boleh mengawal suhu sampel pengukuran, dan dilengkapi dengan cahaya single flip (STF), terbina dalam pelbagai prosedur pengukuran yang boleh diubah suai oleh pengguna sendiri, yang boleh menjalankan pelbagai penyelidikan mekanisme mendalam fluoresensi klorofil di peringkat antarabangsa semasa. Struktur terasnya adalah kepala pengukuran optik yang mengandungi cawan sampel standard gantungan, 3 set sumber cahaya LED terbina dalam dan 1 pengesan isyarat dioda PIN yang ditukar AD 1MHz / 16 bit. Keuntungan dan masa kredit penukaran AD boleh dikawal oleh perisian. Pengesan mengukur isyarat fluorescens klorofil dengan resolusi masa sehingga 4 µs (versi cepat ialah 1 µs).

Bidang aplikasi:

·Ciri-ciri fotosintesis tumbuhan dan penyaringan gangguan metabolisme

·Pengujian tekanan biologi dan bukan biologi

·Kajian kemampuan atau kepekaan tumbuhan terhadap tekanan

·Kajian Kaos Metabolik

·Kajian mekanisme kerja sistem fotosintesis

·Kajian strategi tindak balas fotofisiologi tumbuhan paksa

Contoh khas:

·Alga biru (bakteria biru)

·alga hijau

·Suspensi klorofil

·Suspensi kistik

·Serpihan tumbuhan

Ciri-ciri fungsi:

·Terbina dalam pengukuran induksi fluoresensi klorofil, pengukuran PAM (modulasi denyutan), pengukuran dinamik fluoresensi cepat OJIP, QA - dinamik oksidasi semula, penukaran keadaan S, pemadaman fluoresensi klorofil dan prosedur pengukuran lain, adalah fluoresensi klorofil yang paling komprehensif di dunia

·Teknologi modulasi ganda, boleh mengukur cahaya modulasi ganda warna, dengan cahaya fotokimia modulasi dan cahaya fotokimia berterusan, boleh melakukan pengukuran STF (kilat putaran tunggal), TTF (kilat putaran ganda) dan MTF (kilat putaran pelbagai) dan teknologi FRR tersuai (Kadar Pengulangan Cepat)

·Resolusi masa versi standard sehingga 4 µs, versi cepatSehingga 1 µs, fluorescer klorofil dengan resolusi masa tertinggi semasa

·Unit kawalan adalah dua saluran, boleh menyambungkan sensor suhu untuk kawalan suhu, menyambungkan unit pengukuran oksigen untuk pengukuran tindak balas Hill dan lain-lain

·Sensitiviti yang sangat tinggi dengan had pengesanan minimum 100ng Chla / L

·Mengukur cahaya, cahaya optik, warna sumber cahaya satu refleks tepu, kekuatan boleh disesuaikan

·Host dilengkapi dengan paparan sentuh berwarna untuk melihat grafik lengkung fluoresensi dalam masa nyata

Parameter teknikal:

·Prosedur eksperimen: pengukuran kesan induksi fluoresensi klorofil Kautsky; PAM (modulasi denyutan)Dinamik pemadaman fluoresensipengukuran; Pengukuran dinamik fluoresensi cepat OJIP; QA - Dinamik Reoksidasi; S penukaran keadaan; Induksi fluoresensi klorofil cepat

• Parameter fluorescens:

úPAMPengukuran dinamik pemadam fluoresensi: mengukur lengkung dinamik pemadam fluoresensi, boleh mengira F₀Fm, Fv dan F₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRLebih daripada 50 parameter fluorescens klorofil;

OJIPPengukuran dinamik fluoresensi cepat: mengukur lengkung dinamik fluoresensi cepat OJIP dengan pengiraan F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀kepada FV/F₀, Fv / Fm, M0, Kawasan, Kawasan Fix, SM, SS, N, Phi_P₀kepada psi_₀untuk Phi_E₀untuk Phi_D₀Penggunaan: Phi_Pav, ABS/RC, TR₀/ RCdan et₀/ RCdi₀/ RCLebih daripada 20 parameter yang berkaitan;

úQAKinetika reoksidasi QA: mengukur lengkungan kinetik reoksidasi QA yang disesuaikan dengan amplituden masing-masing fasa cepat (A1, A2, A3) dan masa tetap (T1, T2, T3) dalam proses reoksidasi QA.

úSUjian keadaan S: mengukur lengkung pengurangan fluoresensi ujian keadaan S untuk mengira sistem cahaya tidak aktif II (PSII)_XBilangan pusat tindak balas

úInduksi Fluoresen Flash (FFL, versi cepat sahaja): digunakan untuk mengira kawasan antena yang berkesan, sambungan antena dan lain-lain

úMenyediakan ciri protokol tersuai pengguna untuk mencapai heterogeniti antena PSII PSIIkepadadengan PSIIbetaAnalisis, kawasan pemotongan antena berkesan PSII (SPSIIPengukuran parameter lain (fungsi tersuai pilihan)

úQA– Lengkuk dinamik oksidasi semula danUjian keadaan SLengkuk kemerosotan fluoresensi (Beliau，2010）

·Resolusi masa (frekuensi sampel): pengesan sensitiviti tinggi dengan resolusi masa versi standard 4 µs dan versi cepat 1 µs

·Had pengesanan minimum: versi standard 100ng Chla / L, versi cepat 1μg Chla / L

·Unit kawalan: dilengkapi dengan paparan sentuh berwarna untuk melihat carta lentur fluorescent dalam masa nyata

·Bilik pengukuran:

atauMengukur kilat cahaya: cahaya merah oren 623nm dan cahaya biru 460nm, masa kilat cahaya 2-5µs

oKekuatan cahaya maksimum 170,000 µmol (foton) / m².s, masa kilat cahaya 20-50 µs

oCahaya fotokimia berterusan: kekuatan cahaya maksimum 3500 µmol (foton) / m².s

atauPengesan fluorescens: PIN Photodiode

atauMasehiPenukar: 16bit

oTiub ujian sampel: kawasan bawah 10 × 10mm, jumlah 4ml

• Bilik pengukuran tersuai (pilihan): Warna cahaya, kilat cahaya tepu dan cahaya fotokimia (biru, biru, amber dan lain-lain) dan jalur pengesanan (ChlA, ChlB) boleh disesuaikan masing-masing

• Sumber cahaya inframerah jauh (pilihan): untuk mengukur F₀Panjang gelombang 730nm

·Modul pengukuran oksigen (pilihan): mengukur pelepasan oksigen daripada ganggang

·Kawalan suhu (pilihan): pengatur suhu TR 6000, julat suhu 5-60 ℃, ketepatan 0.1 ℃

• Pengaduran elektromagnetik (pilihan): digunakan untuk mencampur sampel untuk mengelakkan penanaman sampel, boleh mengawal kelajuan secara manual atau perisian secara automatik

• Antara muka komunikasi: port siri RS232 / USB

FluorWinPerisian: menentukan atau mencipta skema eksperimen, tetapan kawalan sumber cahaya, output data, pemprosesan analisis dan paparan carta

Aplikasi khas:

1. Penyelidik Wang Qiang dari Institut Biologi Akwatik Akademi Sains Cina menggunakan fluoresenter klorofil FL3500 (model sebelum FL6000) dan sistem pelepasan termal tumbuhan TL untuk membuktikan bahawa tekanan nitrat pertama-tama memberi kesan kepada sisi reseptor PSII Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Kajian dalam mekanisme fotosintesis ini sering memerlukan kedua-dua instrumen ini untuk diselesaikan.

2.Penyelidik Pan Ruang Liang dari Institut Ekologi dan Geografi Xinjiang Akademi Sains Cina dan kumpulan subjeknya menggunakan fluorescer klorofil FL3500 (model sebelum FL6000) untuk menjalankan kajian toksisiti logam berat, garam, sebatian beracun, herbisida, racun serangga, antibiotik dan pelbagai bahan berbahaya terhadap ganggang dalam persekitaran. Melalui pengukuran fluoresensi klorofil seperti pengukuran dinamik fluoresensi cepat OJIP resolusi tinggi yang unik FL3500, QA - dinamik oksidasi ulang, penukaran keadaan S, mekanisme toksisiti dan kesan ekologiknya yang menyebabkan kerosakan kepada sistem fotosintesis alga dengan kepekatan dan masa pemprosesan yang berbeza didedahkan secara menyeluruh. Pada masa ini, kumpulan subjek Pan Liang telah menggunakan FL3500 (model sebelum FL6000) untuk menerbitkan lebih daripada dua puluh artikel peringkat tinggi dalam jurnal SCI antarabangsa dan jurnal teras domestik.

Tempat asal: Czech

Rujukan:

1. Manaa A, et al. 2019. Toleransi garam quinoa (Chenopodium quinoaWilld) seperti yang dinilai oleh ultrastruktur kloroplast dan prestasi fotosintetik. Botani Alam Sekitar dan Eksperimen 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. Sensitiviti Chlamydomonas reinhardtii kepada tekanan kadmium dikaitkan dengan fototaksis. Sains Alam Sekitar: Proses & Kesan 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Mekanisme molekul aklimatasi suhu dan penyesuaian dalam diatom laut. Jurnal ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Penyelesaian Eutrophication Cyanobacteria Nuisance Melalui Bioteknologi. Sains Gunaan 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Peraturan fungsi PSII dalamCyanothecesp. ATCC 51142 semasa kitaran cahaya gelap. Penyelidikan Fotosintesis 139(1-3): 461-473

6. Smythers A L, et al. 2019. Menyatakan kesan puisi padaChlorella vulgarisorganisma yang bukan sasaran. Kemosfera 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulasi proteom thylakoid dalam tumbuhan kacang kacang yang ditanam pada sinaran yang berbeza: profil proteomik kuantitatif dalam bukanOrganisma model dibantu oleh integrasi data transkriptomik. Jurnal Tumbuhan 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Sistem induksi dan santai fluoresensi klorofil untuk pemantauan berterusan kapasiti fotosintetik dalam fotobioreaktor. Fisiologi Plantarum. Dokumen: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulasi kinetik peningkatan dan kerosakan fluoresensi klorofil, dan perubahan penyerapan yang berkaitan dengan P700 dengan menggunakan kaedah Monte-Carlo kinetik berasaskan peraturan. Penyelidikan fotosintesis. Faks: 10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye JJ, et al. 2018. PsbY diperlukan untuk mencegah kerosakan fotosistem II dalam mutan yang kekurangan PsbMSinekosistisPCC 6803. Fotosintetika, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Perbezaan khusus strain dalam kadar pembaikan Photosystem II dalam picocyanobacteria berkorelasi dengan perbezaan dalam tahap protein FtsH dan corak ekspresi isoform. PLOS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Tindakbalas transkriptomik cyanobacteria lautProchlorococcusuntuk produk lysis virus. Mikrobiologi Alam Sekitar, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgium E, Yeates A M, et al. 2018. Sensitiviti proton antena menentukan strategi panen cahaya fotosintetik, Journal of Experimental Botany 69 ((18): 4483-4493